Задачи по микробиологии экзамен

1. У больного с подозрением на острую форму
бруцеллеза была взята кровь и засеяна на питательный бульон, поставлена
реакция Райта. Через сутки питательная среда осталась стерильной, реакция
Райта отрицательна. На этом основании диагноз «бруцеллез» был снят. Какие
методы исследования были применены? Достаточно ли обоснованы выводы врача?

Ответ: Было
проведено бактериологическое исследование и серодиагностика. Бруцеллы
характеризуются замедленным ростом на питательных средах, посевы инкубируют
не менее 3х недель при температуре 37 градусов, а в данном случае всего
сутки.  В сыворотке больного
бруцеллезом накапливаются агглютинирующие (вначале IgM, затем IgG), неполные блокирующие (IgA, IgG) и опсонические (IgG) антитела. Для их выявления с
диагностической целью используют реакцию Райта (развернутая агглютинация).  Райта реакция— реакция агглютинации
бруцелл (убитых нагреванием) сывороткой крови больного бруцеллезом.
Положительной реакция Райта считается в разведении сыворотки от 1 : 200 и
выше. В диагностических титрах она обнаруживается с 10—11-го дня болезни,
учет результатов через 20-24ч после термостата. Бактериологический метод
трудоемок, длителен, возможен лишь в специальных лабораториях, однако для
диагноза бруцеллёза имеет решающее значение. Поэтому можно сделать вывод, что
выводы врача были не достаточно обоснованы.

2. В
лабораторию поступил материал (шерсть животного) для определения зараженности
возбудителем сибирской язвы. Какой метод исследований следует применить для
этой цели? Что необходимо подготовить?

3. Из
организма степной пеструшки, отловленной в зоне природного очага чумы,
бактериологически изолирована грамотрицательная культура бактерий,
окрашивающихся по полюсам. Бактерии агглютинируются противочумной сывороткой.
На этом основании выделенная культура идентифицирована как Yersinia pestis. Достаточно ли
данных для такого вывода?

5. При
исследовании загнивших трупов манчжурских пищух, найденных в зоне Алтайского
природного очага чумы, гомогенизированные кусочки внутренних органов и кровь
засеяли на питательный агар. Через сутки появился обильный рост посторонней
микрофлоры, колонии чумных палочек не были обнаружены. Какой метод
диагностики был применен? В чем заключается методические погрешности
бактериолога?

6. У больного
с подозрением на бубонную чуму была взята кровь для микроскопического и
бактериологического исследования. На основании негативных результатов анализа
диагноз «чума» был отвергнут. Ваше мнение?

7. Больной был
госпитализирован на вторые сутки после появления признаков пневмонии с
обильным отделением кровавой мокроты. За несколько дней до этого отмечалось
увеличение и болезненность подчелюстных лимфоузлов. В связи с резким
ухудшением состояния больного были назначены антибиотики широкого спектра
действия. При микроскопическом исследовании мокроты микроорганизмы, похожие
на чумные, не были обнаружены. Диагноз «чума, легочная форма» был снят.
Правильно ли это?

9. У мужчины, занимавшегося охотой в зоне природного
очага чумы, появилась головная боль, повысилась температура, стали
болезненными лимфоузлы в области шеи. При микроскопировании мазков из крови
больного, возбудитель чумы не обнаружен. Достаточно ли данных для того, чтобы
отвергнуть диагноз «чума»?

Ответ:  Данных недостаточно, так как
микроскопическое исследование дает только ориентировочное заключение (по
морфологии нельзя точно сказать, что это возбудитель чумы Yersinia pestis(энтеробактерия) –
овоидная палочка с биполярным окрашиванием, возможна эта другая иерсиния).

     Для
подтверждения диагноза «чума» необходимо также произвести посев материала на
пит. среды (мясопептонный агар, элективные среды, Бульон Хоттингера) –
бактериологический метод ( окончательный диагноз).  Инкубацию посевов проводят при 28 °С. В
положительных случаях через 12 ч появляются колонии в виде характерных
«кружевных платочков».

     Ставят биопробы на морских
свинках и белых мышах. Для постановки биологической пробы
животных заражают внутрибрюшинно. подкожно или внутрикожно, а в случае
загрязнения материала посторонней микрофлорой втиранием в скарифицированную
кожу. В зависимости
от способа заражения и степени чувствительности к возбудителю животные
погибают от чумы на 3—9-й день после инфицирования, изменения во внутренних
органах в виде геморрагического воспаления, кровоизлияниям мазках- отпечатках
из органов -множество чумных микроорганизмов; посевы инфицированных органов и
крови дают обильный рост возбудителя.

 В качестве экспресс-диагностики используют
РИФ,  позволяющую поставить
предварительный диагноз уже через 2 часа. Метод ускоренной диагностики чумы основан на
свойстве чумного бактериофага быстро (30—40 мин) размножаться в присутствии
микроба чумы.

Серологическое
исследование проводится постановкой РНГА, ИФА, РН антител

10. У больного
с подозрением на бруцеллез для исследования была взята кровь (5мл), которую
засеяли на печеночный бульон. После 2 суток экспозиции в термостате был
сделан высев на печеночный агар, рост бруцелл не обнаружили. Диагноз
«бруцеллез» был снят. Какой метод диагностики был применен? Правилен ли вывод
врача?

11. У больного с обширной инфицированной раной
для анализа было взято раневое отделяемое. Исследуемый материал засеяли на
элективные плотные и жидкие среды. Через сутки в посеве на плотную среду
обнаружили среднего размера желтоватые выпуклые колонии с ровными краями и
блестящей поверхностью. В пробирках с бульоном образовалась равномерная муть.
В окрашенных по Граму мазках из колоний обнаружили небольшие (по 2-3бактерии)
группы шаровидных бактерий, окрасившихся в сине-фиолетовый цвет. Какой метод
диагностики был применен? Какие элективные среды использовали? К какой группе
может быть отнесен выделенный возбудитель?

Эталон ответа: бактериоскопический метод.
Среды – желточно-солевой агар, питательный бульон с повышенной концентрацией
хлорида натрия. Возбудитель может быть отнесен к группе патогенных кокков,
скорее всего, стафилококк, но необходимы дальнейшие исследования –
бактериологическое исследование.

Ответ:  — Использовались бактериоскопический и
бактериологический методы.

— При выделении стафилококков
из исследуемого материала, содержащего различные микроорганизмы, используются
элективные среды: молочно-солевой агар, желточно — солевой агар Чистовича.
Повышенные концентрации хлорида натрия (5—10%), не мешая росту стафилококков,
подавляют размножение сопутствующей флоры. Использовались бактериоскопический
и бактериологический методы. На мясопептонном бульоне дают диффузный рост, на
плотных средах образуют колонии диаметром 2—3 мм. круглые, с ровными краями,
слегка выпуклые. Цвет колоний различен, в зависимости от образуемого
пигмента: золотистый, лимонно-желтый, палевый.

 — Возбудитель:
Стафилококки имеют шаровидную форму от 0.6 до 1 мкм в диаметре. В чистой
культуре располагаются в виде скоплений, напоминающих гроздья винограда. В
мазках из гноя встречаются одиночные кокки, иногда диплококки и небольшие
скопления (рис. 30. а). Стафилококки неподвижны, не образуют капсул и спор.

12. У больного, поступившего в урологическое
отделение с высокой температурой, была взята для исследования моча, засеянная
на кровяной агар и в сахарный бульон. Через сутки в посевах на плотную среду
выявили небольшие выпуклые колонии с зоной гемолиза, в бульоне появился рост
в виде скудного хлопьевидного осадка. Врач-бактериолог сделал вывод о
стрептококковой инфекции. Обоснованно ли такое заключение? Какие методы нужно
дополнительно использовать?

Эталон ответа: Заключение врача обосновано
(культуральные свойства, факторы патогенности — гемолизины). Но необходимы
дополнительные исследования: выделение чистой культуры, ее идентификация по
биохимическим, антигенным свойствам, серотипирование, обнаружение токсина А,
так как стрептококк — это условно-патогенный микроорганизм и может быть
выделен из материала от больного ошибочно.

Эталон ответа: Заключение врача обосновано (культуральные
свойства, факторы патогенности — гемолизины). Но необходимы дополнительные
исследования (выделение чистой культуры, ее идентификация по биохимическим,
антигенным свойствам, серотипирование, обнаружение токсина А), так как
стрептококк – это условно-патогенный микроорганизм и может быть выделен из
материала от больного ошибочно.

Свой ответ:
Заключение врача обосновано, так как 
основным методом идентификации является бактериологический метод (культуральные
свойства(на агаре с кровью стрептококк образует мелкие (1—2 мм в диаметре) по­лупрозрачные
палочки, сероватые или бесцветные, которые хорошо снимаются петлей и имеют
зоны гемолиза, В жидких питательных средах для стрептококков характерен придонный,
часто поднимающийся по стенкам рост. При взбалтывании зернистая или
хлопьевидная взвесь.), факторы патогенности — гемолизины). Но необходимы
дополнительные исследования (выделение чистой культуры, ее идентификация по
биохимическим(метаболизируют глюкозу с образованием молоч­ной и других
кислот), антигенным свойствам, серотипирование, обнаружение токсина А), так
как стрептококк – это условно-патогенный микроорганизм и может быть выделен
из материала от больного ошибочно.

Исследуемый материал за­севают на кровяной агар в чашку
Петри. После инкубации при 37 °С в течение 24 ч отмечают характер колоний и
наличие вокруг них зон гемолиза. Из части материала, взятого из коло­ний,
готовят мазок, окрашивают по Граму и микроскопируют. Для получения чистой
культуры 1—3 подозрительные колонии пересевают в пробирки со скошенным
кровяным агаром и сахарным бульоном.  На кровяном агаре
Streptococcuspyogenes образует мелкие мутноватые круглые колонии. В бульоне
стрептококк дает придонно-пристеночный рост в виде хлопьев, 
 оставляя среду прозрачной. По характеру гемолиза на кровяном агаре
стрептококки делятся на три группы: 1) негемолитические; 2) а-гемолитические
3) ?-гемолитические, образующие вокруг колонии пол­ностью прозрачную зону
гемолиза. Заключительным этапом бактериологического исследования является
идентификация выделенной культуры по антигенным свойствам. По данному
признаку все стрептококки делят на серологические группы (А, В, С, D и т.
д.). Серогруппу определяют в реакции преципитации с полисахаридным преципитиногеном
С. Серовар определяют в реакции агглютинации. Выявленную культуру
стрептококка проверяют на чувствительность к антибиотикам методом дисков.
Серодиагностика: устанавливают наличие специфических
антигенов в крови больного с помощью РСК или реакции преципитации. Антитела к
О-стрептолизину определяют для подтверждения диагноза ревматизма.

17. У больного, поступившего в урологическое
отделение с высокой температурой, была взята для исследования моча, засеянная
на жидкие и плотные универсальные среды. Через 24 часа был выявлен рост в
виде круглых плоских слизистых колоний на плотной среде, в виде равномерной
мути в жидкой среде. Кроме того, среды окрасились в сине-зеленый цвет.
Сахаролитическая активность выделенной культуры оказалась низкой (только окисление
глюкозы), протеолитическая активность – высокой, чувствительность к
антибиотикам – низкой (только к цефалоспоринам). Какой микроорганизм вызвал
заболевание? Какие иммунобиологические препараты можно назначить для лечения?

Ответ: P.aeruginosa (синегнойная палочка) — один из
основных возбудителей локальных и системных гнойно — воспалительных процессов
в условиях медицинских стационаров.

патогенным потенциалом в
особенно у ослабленных больных, обладают и другие виды — P.putida. P.fluorescens, P.(Xanthomonas) maltophilia

16. При микроскопировании мазков, приготовленных
из раневого отделяемого, были выявлены крупные палочки с центрально
расположенной спорой. Материал затем был посеян на питательный агар в чашки
Петри. Через трое суток был обильный рост посторонней микрофлоры, колоний
клостридий не было обнаружено, на основании чего диагноз «клостридиальная
раневая инфекция» был отвергнут. Правилен ли вывод врача? Какой метод
диагностики был применен? В чем заключается методические погрешности?

15. У больного с подозрением на менингококковую
инфекцию были сделаны мазки со слизистой оболочки верхних отделов носоглотки.
В мазках выявили многочисленные грамотрицательные диплококки и поставили
диагноз «менингит». Дальнейшее исследование было решено не проводить.
Достаточно ли результатов бактериоскопического исследования для
окончательного заключения? Прав ли врач-бактериолог?

Ответ: Бактериоскопического метода недостаточно для постановки
диагноза, так как некоторые другие микроорганизмы могут иметь сходную
морфологию. Необходимо провести Бактериологическое исследование
с целью выделения и идентификации чистой культуры менингококка подвергают
носоглоточную слизь, кровь и ликвор. Посев материала для получения чистой
культуры производят на плотные или полужидкие питательные среды, содержащие
сыворотку, кровь или асцитическую жидкость. Культуры инкубируют в течение
18-24 ч при 37 «С в сосуде со свечой или в специальном термостате с
повышенным содержанием (8—10 %) СОг. Идентификацию выделенной культуры про­водят
на основании следующих свойств: круглые бесцветные нежные колонии маслянистой
консистенции, не дает гемолиза

• оксидазаположительные колонии
• образованием уксусной кислоты при ферментации глюкозы и мальтозы (но не
лактозы, сахарозы и фруктозы);* принадлежность к серогруппам определяют в
реакции агглютинации (РА).

14. В бактериологическую лабораторию поступило несколько
образцов кожи КРС для определения зараженности возбудителем сибирской язвы.
Какой экспресс-метод исследований следует применить для этой цели? Что
необходимо иметь в наличии в лаборатории? Каковы действия в случае
положительного заключения?

Ответ: По эпидемиологическим показаниям исследуют различные
объекты внешней среды, а также шерсть и щетину животных. Все образцы помещают
в герметичные сосуды и транспортируют закупоренными в опломбированных боксах
или деревянных ящиках в лаборатории особо опасных инфекций.

Микробиологическую диагностику
проводят с соблюдением правил техники безопасности как при особо опасных
инфекциях. Для диагностики применяют все пять методов микробиологической
диагностики.

Первоначально готовят мазки и
окрашивают их по Граму и для обнаружения капсул (по Романовскому Гимзе) и
спор (по Ауэске). Наличие в мазках крупных грам-положительных стрептобацилл,
окруженных капсулой, дает возможность поставить предварительный диагноз.
Люминесцентная микроскопия применяется как дополнительный метод диагностики
сибирской язвы, при этом сибиреязвенные бациллы, обработанные люминесцирующей
сывороткой — палочки с ободком, светящиеся зеленоватым светом. Для выделения
ЧК исследуемый засевают на МПА и МПБ, а также заражают лабораторных животных
(белые мыши, морские свинки). Выделенную чистую культуру идентифицируют но
общепринятой схеме с учетом морфологии, характера роста на МПА и МПБ,
разжижения желатина в виде перевернутой елочки, отсутствия подвижности,
положительного теста «жемчужного ожерелья» и лизиса сибиреязвенным
бактериофагом «ВА-9» и «Саратов». Дополнительно определяют лецитиназную,
фосфатазную и гемолитическую активность. В биопробе патологический материал
или испытуемую культуру вводят подкожно: морским свинкам в паховой области,
мышам в корень хвоста. Обычно мыши погибают через 1-2 суток, морские свинки —
через 2-4 суток. Наблюдение за животными продолжают в течение 10 дней. У
павших животных исследуют печень, селезенку, лимфатические узлы, почки, кровь
из полостей сердца, места введения исследуемого материала. О наличии
возбудителя сибирской язвы

свидетельствуют типичная
патолог о-анатомическая картина у подопытных животных: отек в месте введения
исследуемого материала, темная не свернувшаяся кровь, кровоизлияния в
клетчатке, рыхлая селезенка и плотная красная печень. В мазках-отпечатках из
органов и крови — наличие грамположительных капсулированных палочек.
Серодиагностика проводится в тех случаях, когда не удается обнаружить
возбудителя в материале. Для определения антител в сыворотке крови больного
используют реакцию латексной агглютинации или РПГА с прогективным
сибиреязвенным АГ. Сибиреязвенные антигены определяют в РИФ, ИФА, РСК, РИГА,
РП в геле и реакции термопреципитации по Асколи. Реакция Асколи имеет большое
значение, гак как позволяет обнаружить возбудитель при от­рицательных
результатах бактериологического исследования. Наличие сибиреязвенного ан­тигена
в разложившемся или мумифицированном трупе животного, коже (свежей, сухой,
выделанной) и изделиях из нее, шкурках, мехе, шерсти определяют с помощью
реакции термонрецини гации но Асколи. Однако для прижизненной диагностики она
не дает серьезных преиму ществ перед бактериологическим и серологическим
методами.

Для
ретроспективной диагностики при эпидемиологических исследованиях ставят
кожные аллергические пробы с антраксином. Антраксин вводят внутрикожно
объемом 0,1 мл, результаты учитывают через 24—48 ч. Пробу считают
положительной при наличии гиперемии диаметром более 16 мм и инфильтрата.

Дтя
экстренной профилактики назначают сибиреязвенный иммуноглобулин. Не
специфическая профилактика санитарно-ветеринарным мероприятиям:

•        
Изоляция больных и подозрительных животных.

•        
Сжигание трупов погибших животных и зараженных
объектов (подстилка, навоз).

•        
Обеззараживание мест содержания больных животных.

•        
Очистка водопоев.

•        
Осушение заболоченных участков (перепахивание,
хлорирование).

•        
Организация скотомогильников. При невозможности
сжигания трупов их хоронят на отдельных сухих и пустынных участках; глубина
ямы должна быть не меньше 2 м, труп кладут на толстый слой хлорной извести и
засыпаю! ею сверху слоем до 10 см. Все мероприятия по захоронению следуег
проводить с соблюдением санитарных норм.

•        
Санитарный надзор за предприятиями, занятыми
переработкой животного сырья. Все поступающее сырье проверяют в реакции
термопреципитации по Асколи, меховые изделия изготовляют только из сырья,
давшего отрицательный результат в этой реакции.

Реакция термопрецини гации но
Асколи. основана на обнаружении термостабильных антигенов Bacillus anthracis, которые
экстрагируют физиологическим раствором из исследуемого материала. Сыворотку
для осаждения (преципитации) получают при гипериммуннизации лошадей убитой
культурой сибиреязвенного микроба. Если в исследуемом экстракте имеется
антиген, то на границе его контакта с раствором сыворотки появляется тонкое
кольцо помутнения.

18. При бактериоскопическом исследовании
окрашенных по Граму мазков слизи из носоглотки больного морфологически специфичных
микроорганизмов не было обнаружено. Так как состояние больного ухудшилось,
повторно взятую мокроту засеяли на среду Клауберга и Борде-Жангу. На среде
Клауберга через 36 часов появились прозрачные и беловатые мелкие колонии, на среде
Борде-Жангу – мелкие колонии с ртутным блеском. Какие микроорганизмы являются
вероятными возбудителями заболевания? Какова дальнейшая тактика
врача-бактериолога?

Бактериологический метод

1.      (коклюш)

Ответ: Возбудитель
коклюша — Bordetella pertussis —был выделен из мокроты

S-форма, или 1 фаза по Лесли и Гарднеру, растут только
на питательной среде, состоящей из картофельно-глицеринового агара с
добавлением крови {среда Барде- Жангу).

Колонии палочки коклюша
гладкие, блестящие, прозрачные, куполообразные с жемчужным или ртутным
оттенком, размером около 1 мм в диаметре. Колонки бактерии паракоклюша по
внешнему виду очень похожи на бактерии коклюша, но они более- крупные по
размерам и появляются раньше, чем коклюшные колонии.

Колонии коклюшных и
паракоклюшных микробов на среде Борде-Жангу окружены характерной зоной
гемолиза.

Дифференциальными
признаками бактерии пертуссис и бактерии гщрапертуссис служат данные серологических исследований (реакция
агглютинации и биохимическая характеристика). Основные отличительные
признаки, позволяющие дифференцировать коклюшные и паракоклюшные культуры:
паракок-люшные растут при первых пересевах на простом агаре (без крови), на
казеиново-угольном агаре и мясо-пептонном агаре

(особенно с
добавлением тирозина), а также на кусочке картофеля, образуя коричневый
пигмент, расщепляют мочевину, утилизируют цитраты.

Коклюшный микроб на простом
аг аре не растет, пигмента не образует и мочевину не расщепляет. Кроме того,
антительной сывороткой коклюшные и паракоклюшные возбудители агглютинируются
примерно до Vio
титра. Также ставят пробу на уреазу — в пробирку с исследуемой
культурой добавляют мочевину и фенолфталеин, пробирку встряхивают и ставят в
термостат. Реакция (изменение цвета) может наступить через 15— 20 мин.
Окончательный результат учитывается через 2 ч. Положительная реакция —
окрашивание жидкости в малиновый цвет — свойственна культурам
паракокчюшных бактерий.

19. В бактериологическую лабораторию поступил
мазок с задней стенки глотки ребенка с подозрением на коклюш или паракоклюш.
В связи с отсутствием реактивов для проведения РИФ материал методом кашлевых
пластинок был засеян на питательный агар, КУА и среду Борде-Жангу. Через 24
часа обнаружили средних размеров бесцветные (бесцетные), серовато-кремовые
(на КУА) и похожие на капельки ртути с небольшой зоной гемолиза (на среде
Борде-Жангу) колонии. Среда КУА приобрела буро-коричневую окраску. Какой
микроорганизм вызвал заболевание? Какие методы исследования следует провести,
чтобы поставить окончательный диагноз?

1.    ? (паракоклюш).

Ответ: Колонии палочки
коклюша гладкие, блестящие, прозрачные, куполообразные с жемчужным
или ртутным оттенком, размером около 1 мм в диаметре. Колонки бактерии
паракоклюша по внешнему виду очень похожи на бактерии коклюша, но они более-
крупные по размерам и появляются раньше, чем коклюшные колонии.

Бактерии кокчюша. так же как
атипичные и паракоклюшные. растут на обычных питательных средах. На
полусинтетической среде — казеиново-угольном агаре (КУА) — колонии коклюшных
микробов мелкие (0,5—1 мм), выпуклые, четко контуриро-ванные, блестящие,
гладкие, серовато-кремового цвета и вязкой консистенции.

Колонии коклюшных и
паракоклюшных микробов на среде Борде-Жангу окружены характерной зоной
гемолиза (зона нерезко отграничена и распространяется диффузно в окружающую
среду). Коклюшные микробы не редуцируют сахара, необразуют индола, не
редуцируют нитратов и не используют ци гратов. Коклюшный микроб —
факультативный аэроб. Оптимальные условия культивирования 35-36 °С.

Дифференциальными
признаками бактерии пертуссис и бактерии гщрапертуссис служат данные
серологических исследований (реакция агглютинации и биохимическая
характеристика). Проводят для подтвержденияОсновные отличительные признаки,
позволяющие дифференцировать коклюшные и паракоклюшные культуры:
паракок-люшные растут при первых пересевах на простом агаре (без крови), на
казеиново-угольном агаре и мясо-пептонном агаре

(особенно с
добавлением тирозина), а также на кусочке картофеля, образуя коричневый
пигмент, расщепляют мочевину, утилизируют цитраты.

Бактериологическеое исследование(
окончательный ответ)

Коклюшный
микроб на простом аг аре не растет, пигмента не образует и мочевину не
расщепляет. Кроме того, антительной сывороткой коклюшные и паракоклюшные
возбудители агглютинируются примерно до Vio титра. Также ставят пробу на уреазу — в пробирку с
исследуемой культурой добавляют мочевину и фенолфталеин, пробирку встряхивают
и ставят в термостат. Реакция (изменение цвета) может наступить через 15— 20
мин. Окончательный результат учитывается через 2 ч. Положительная реакция —
окрашивание жидкости в малиновый цвет — свойственна культурам
паракокчюшных бактерий

18. В
материале, полученном от больного, обнаружили грамположительные,
расположенные под углом друг к другу, палочковидные бактерии с несколько
утолщенными концами. Для каких патогенных микроорганизмов характерна подобная
морфология? Какие дополнительные методы окрашивания можно предложить для
уточнения морфологических особенностей возбудителя? Необходимо ли проведение
дальнейшего исследования (да)?

Коринобактерии дифтерии

20. У больного с подозрением на дифтерию были
взяты мазки со слизистой оболочки зева и носа. Микроскопически выявили
грамположительные, расположенные под углом друг к другу, палочковидные
бактерии с несколько утолщенными концами. Далее на среде Клауберга была
выделена чистая культура Corynebacterium diphtheriae,
на основании чего было дано положительное заключение о дифтерийной инфекции.
Достаточно ли данных для подтверждения диагноза дифтерии? Если нет, то какие
исследования еще можно провести?

Бактериоскопический, бактериологический

Ответ: Возбудитель дифтерии Corynebacterium diphtheriae (от coryne — булава, diphthera пленка) относится к роду Corynebacterium.

Дифтерийные бактерии — тонкие
слегка изогнутые палочки длиной 3—5 мкм, шириной 0,3 мкм с характерным
расположением в мазках: попарно, под углом друг к другу, напоминая цифру V.
Концы палочек имеют булавовидные утолщения, содержащие зерна волютина (тельца
Бабеша—Эрнста).

Для бактериологического
исследования берут материал из- под пленки, а если ее нет (или при
обследовании на носительетво) — слизь из зева и носа двумя тампонами
раздельно. Предварительную бактериоскопию мазка с тампона проводят только по
требованию лечащего врача. Посев делают на избирательные питательные среды
параллельно: на свернутую сыворотку и среду Клауберга. Наличие роста и
обнаружение при окраске по Леффлеру коринебактерии с характерной морфологией
и расположением позволяют проводить дальнейшую идентификацию по
биохимическим, антигенным свойствам и определению токсигенности. Последнее
исследование имеет особенно важное значение при изучении культур, выделенных
от бактерионосителей. 11осители чаще всего выделяют нетоксигенные штаммы;
заболевание же вызывают только токсигенные дифтерийные палочки.

Определяют
токсигенность по методу Оухтерлони       преципитацией
в агаре.

Выделенную культуру в виде
«бляшки» или штрихом засевают на поверхность агаровой среды в чашке Петри
рядом с полоской фильтровальной бумаги, пропитанной дифтерийной
антитоксической сывороткой (расположенной по диаметру чашки). Если культура
токсигенна, то через 24—48 ч диффундирующий в питательную среду токсин в
местах, где он «встречается» с сывороткой, также диффундирующей в агар,
образует линии преципитации белого цвета.

21. В гнойном материале, полученном от больного,
микроскопически выявлены грамотрицательные диплококки, вызывающие
незавершенный фагоцитоз. При посеве на элективные среды (КДС, сывороточный
агар) наблюдали рост колоний, напоминающих капли росы. Выделенная чистая
культура возбудителя обладала низкой биохимической активностью
(ферментировала только глюкозу). Какой возбудитель был выделен? Какие
экспресс-методы диагностики можно было использовать?

1.    (Гонококки)

Метод – экспресс:  применяют
встречный иммуноэлектрофорез. В качестве антигенов берут отделяемое из
мочеиспускательного канала или шейки матки обследуемых. Источником антител
служит гипериммунная антигонококковая сыворотка.

Ответ: Возбудитель- гонококк ( Neisseria gonorrhoeae). Для диагностики применяют бактериоскопический ( окр.по Граму и
метилен.синим),бактериологический (проводят когда гонококки в мазках не
обнаруживают или находят атипичные, измененные формы), и серологический
(используют при хронической гонорее, при отсутствии у больного выделений.
Проводят РСК по Борде-Жангу, которая бывает положительной с 3-4 недели
болезни. В качестве АГ для РСК применяют гоновакцину или АГ из убитых
гонококков) методы.
Метод – экспресс:  применяют
встречный иммуноэлектрофорез. В качестве антигенов берут отделяемое из
мочеиспускательного канала или шейки матки обследуемых. Источником антител
служит гипериммунная антигонококковая сыворотка.

(Суть метода
встречного иммуноэлектрофореза
заключается в следующем:

— исследуемые
антигены и смесь антител помещают в лунки, расположенные на противоположных
концах пластины с гелем;

— вдоль линии,
соединяющей лунки, пропускают постоянный электрический ток;

— в
электрическом поле антитела и антигены быстро перемещаются по направлению
друг к другу;

— в месте
связывания антигенов с антителами образуются линии преципитации.

Встречный
иммуноэлектрофорез применяют, когда антигены и антитела обладают разной
электрофоретической подвижностью. Этот метод позволяет быстро определить
антитела в пробе и применяется в экспресс диагностике инфекционных
заболеваниях.)

36. При плановом
обследовании сотрудников детского дошкольного учреждения с помощью реакции
Вассермана серопозитивных лиц не было выявлено. Но при заборе крови медсестра
обратила внимание на многочисленные пустулы на руках одной из нянь.
Диагностику какого заболевания проводят с помощью этой реакции? На чем
основано проведение реакции Вассермана? Какие дополнительные исследования
можно провести, чтобы исключить наличие этого заболевания у няни?

Реакция Вассермана (РВ)

Для пробы на реакцию Вассермана исследуется кровь из
локтевой вены. При заражении больного сифилисом проба на реакцию
Вассермана дает положительный результат не сразу, а только через 6—7 недель.

При сероотрицательной стадии первичного сифилиса
отрицательная реакция Вассермана не может служить показателем отсутствия
болезни и для того, чтобы подтвердить или опровергнуть диагноз, используются
более точные методы диагностики

·        
Реакция иммунофлюоресценции (РИФ)

Эта проба основана на том, что
бледные грепонемы, которые берут от зараженного сифилисом кролика, при
взаимодействии с сывороткой больного сифилисом человека дают
желто-зеленоватое свечение при микроскопировании в люминесцентном микроскопе.
Если сифилиса у испытуемого человека нет, то свечения не наблюдается. Если же
свечение выявлено, то его интенсивность оценивается так же, как при пробе на
реакцию Вассермана:

1+ или отсутствие свечения —
отрицательная проба 2+, 3+, 4+ — положительная проба

Важно то, что РИФ дает
положительный результат на более ранних стадиях сифилиса, чем РВ, из-за ее
большей чувствительности.

·        
Реакция иммобилизации бледных трепонем (РИБТ)

Эта проба позволяет распознать ложноположительный
результат РВ, который иногда может быть у здорового человека, поэтому обычно
при положительном анализе на РВ его подтверждают или опровергают при помощи
анализа на РИБТ. В некоторых случаях используются и другие методы
диагностики, например, компьютерная томография для диагностирования
нейросифилиса, но эти методы не столь распространены и применяются в редких
случаях по решению венеролога. Точнейшим методом диагностики возбудителя
является ПЦР-диагностика( до 95% точности)

35. У пациента,
обратившегося за медицинской помощью, обнаружены многочисленные язвочки на
слизистой оболочке рта и образование, похожее на твердый шанкр на внутренней
поверхности щеки. Какой материал нужно взять от больного для проведения
микробиологического исследования? Какие исследования нужно провести с учетом
особенностей локализации возбудителя?

Это сифилис (первичный период), Для проведения
микробиологического исследования необходимо взять отделяемое твёрдого шанкра
и материал из язвочек.  Биоптпт
региональных лимфоузлов.

Можно провести серологические
МИ: ИФА, РПГА. РИФ. РИТ( в качестве АГ используют ультразвуковой экстракт
трепонем. выращенных в яичке кролика.) Реакция Вассермана с кардилипиновым и
трепонемным АГ-ом.

33. В
поликлиническое отделение обратился мужчина 30 лет с жалобой на высокую
температуру, слабость и ломоту в коленных суставах. При осмотре выявлена
эритема диаметром 10см на внутренней стороне левой голени. При опросе
выяснили, что примерно месяц назад в тайге его укусил клещ, а так как мужчина
был привит от клещевого энцефалита, то за медицинской помощью не обращался. Врач
назначил проведение бактериологического исследования биоптатов кожи из
эритемы, которое оказалось безрезультатным – возбудитель в чистой культуре не
был выделен. Какой предварительный диагноз поставил врач? Какой метод
исследования следует использовать для подтверждения диагноза?

Ответ:

·        
Клещевой риккетсиоз. При укусе инфицированного
клеща чз 3-5 дней появляется, первичный аффект в виде папулы с последующим
некрозом в центре.

Для подтверждения диагноза необходимо использовать
серологичческий метод с применением РСК, РА, РНГА, РИФ, ИФА. Также возможно
применеие ПЦР

28. Из фекалий
больного с сильной диареей была выделена чистая культура грамотрицательных
палочковидных микроорганизмов, по совокупности морфологических,
культуральных, биохимических свойств отнесенная к виду Escherishia coli. На основании полученных
результатов был поставлен диагноз «эшерихиоз» и назначена антибиотикотерапия.
Какой метод исследования был применен? Правомерен ли вывод врача? Какие
дополнительные исследования нужно было провести?

Ответ: Было проведено
бактериологическое исследование,  Вывод
врача правомерен, потому что по совокупности всех признаков было верно
установлено что это Escherishia coli
т.к. Биохимические свойства, состав­ляющие основу дифференциальной
диагнос­тики при проведении бактериологического исследования, следующие:

•     продукция
кислоты и газа при ферментации глюкозы,

•     ферментация
лактозы,

•    
неспособность образовывать сероводород,

•    
продукция индола.

Дополнительно можно
провести ПЦР

21. Из фекалий женщины,
контактировавшей с больными холерой, была выделена чистая культура
микроорганизмов, морфологически подобных холерному вибриону. Дальнейшее
исследование было решено не проводить. Достаточно ли фактов для постановки
диагноза? С помощью каких исследований можно отдифференцировать возбудителя
холеры от холероподобных вибрионов?

Ответ: При подозрении на холеру применяют ускоренные методы
бактериологической диагностики: люминесцентно-серологический. иммобилизации
вибрионов холерной 0- сывороткой с последующей микроскопией в тёмном поле и
др. Анализ занимает от 15 мин до 2 ч. К методам экспресс-диагностики также
можно отнести выявление антигенов холерных вибрионов в исследуемом материале
в РКА. PJ1A. ИФА. ГЩР. Результаты всех перечисленных методов расценивают как
ориентировочные. Бактерии, не агглютинируемые противохолерной О-сывороткой,
называют НАГ-вибрионами. Они могут вызывать сходные с холерой заболевания.
Кроме стабильного эндотоксина, выделяющегося при разрушении микроорганизма.
НАГ-вибрионы образуют термолабильный эндотоксин и способны вызывать
холероподобные заболевания.

1. Среди сотрудников большой организации в течение недели
   было зарегистрировано три случая холеры. Какие исследования необходимо
   провести по эпидемиологическим показателям для выявления носителей и
   больных в этом коллективе?

12.
К участковому врачу в поликлиническом отделении обратилась молодая женщина с
жалобами на боли в желудке и частую изжогу. Свое недомогание связывает с
недавно выявленным хеликобактериозом у старших членов семьи. При
эндоскопическом исследовании был выявлен эрозивный гастрит, промывные воды и
желудочный сок взяли для проведения микробиологического исследования.
Хеликобактер в материалах от больной не обнаружили. В чем заключалась
методологическая ошибка врача? Какие методы исследования следует применить
для уточнения диагноза?

Ответ:
Методологическая ошибка врача заключается в том, сто он неправильно взял
материал для исследования. Хеликобактерии имеют тропность к эпителию ЖКТ,
поэтому следовало взять  биоптаты слизистой оболочки желудка и
двенадцатиперстной кишки.

Фиброгастроскопия с взятием биопсии с
пораженных участков слизистой. Требует правильного забора, соблюдения правил
транспортировки материала и зависит от качества гистологического
обследования. Хорошо применять для первичного обследования с целью
установления характера поражения слизистой и места локализации. После
проведения курса антибактериальной терапии применение фиброгастроскопии
нежелательно — доказано что даже при самой тщательной обработке зонда могут
сохранится хеликобактерии

Бактериоскопический метод.
Выявляют бактерии в препаратах, окрашенных гематоксилин-эозином или
акридиновым оранжевым. Это грамотрицательные, короткие, извитые S-образные
бактерии средних размеров, подвижные, имеют 4-5 жгутиков. В фазовоконтрастном
микроскопе определяют характерную подвижность.

Бактериологический метод. Производят посев материала на кровяной
агар с амфотерицином. культивируют в термостате 5-7 суток при 37° в
микрофильных. аэробных и анаэробных условиях. Вид микроба определяют по
характерной морфологии и виде колоний, способности к росту только в
микроаэрофильных условиях, по наличию оксидазной и уреазной активности .
Хорошо растут в микроаэрофильных условиях, в аэробных и анаэробных условиях
не растут. Температурный оптимум 37°С, не растут при температуре 25-28 и
42°С, хорошо растут на кровяном агаре, на средах, содержащих 10% сыворотки.
Не растут на средах, содержащих глицерин, желчные соли и NaCl. Биохимические
свойства. Оксидазо- и каталазоположительны, проявляют выраженную уреазную
активность, обладают фосфатазой, образуют H₂S, не свертывают
молоко. Антигены. Имеется О-АГ — ЛПС, Н-АГ, а также поверхностные
мембранные белковые АГ (OMP-белки), по которым определяют типоспецифичность
возбудителя с помощью моноклональных АТ.

Серологический метод основан на определении
уровня антител, которые вырабатываются в ответ на хеликобактерии:

1)       
для определения острой стадии — определение IgA

2)       
для определения наличия инфекции — определение
IgG

Определение уровня иммуноглобулинов является наиболее
достоверным (специфичность 91%, чувствительность 97%), наиболее
доступным (кровь взятая натощак), наименее инвазивным методом
диагностики хеликобактерной инфекции и наиболее приемлемым для
контроля излеченности, т.к при проведении ФЭГДС после лечения возможно
повторное инфицирование.

11. В поликлиническое отделение
обратилась женщина с жалобами на периодическую диарею в течение последних
трех месяцев. Других клинических проявлений заболевания не было выявлено. При
опросе выяснили, что среди коллег в последнее время многие болели шигеллезной
дизентерией. Принимая во внимание давность заболевания, какое исследование
следует провести?

Ответ: Принимая
давность заболевания, используется серологический метод (РНГА) — определение в крови специфических
противошигеллезных антител. В качестве стандартных антигенов используют
эритроцитарные диагностикумы из шигелл Флекснера и Зонне. Диагностическим для
шигеллеза Зонне считают титр 1:100, шигеллеза Флекснера — 1:200.

Также используют бактериологический метод как основной. Он
предполагает выделение возбудителя из испражнений при посевах на питательные
среды, определение чувствительности к антибиотикам и должен проводиться до
начала этиотропной терапии. Посев лучше делать у постели больного. Если это
невозможно, то взятый материал (испражнения с патологическими примесями, за
исключением крови) следует поместить в пробирку с консервирующей средой и не
позже, чем через 2 ч доставить в лабораторию. Посев материала осуществляют на
сложные питательные среды Плоскирева, Левина. Предварительный
результат исследования
может быть получен на 2-й день, окончательный — на 4-5-й день. Возбудитель: Shigella dysenteriae.

8. При исследовании фекалий больного
с подозрением на брюшной тиф (1 неделя заболевания) чистую культуру
возбудителя выделить не удалось. На основании чего диагноз «брюшной тиф» был
снят. Какой метод исследования был использован? В чем заключается
методическая ошибка врача? Какой дополнительный метод исследования следует
применить для уточнения диагноза?

1. При исследовании сыворотки крови больного с подозрением
   на сыпной тиф получены следующие результаты РСК: титр антител с
   антигеном из риккетсий Провачека 1:50, с антигеном из риккетсий Музера
   1:400. Как вы расцените результаты исследования?

1. В лабораторию поступила кровь больного с подозрением на
   сыпной тиф (14 сутки заболевания). Какой метод исследования следует
   применить с диагностической целью, учитывая необходимость дифференциации
   эпидемического и эндемического сыпного тифа?

Эталон ответа: РСК, ИФ, на титр
антител

7. При исследовании сыворотки крови
больного с подозрением на сыпной тиф обнаружены следующие результаты РСК: Как
вы расцените результаты исследования?

Ответ: Диагностические титры РСК 1:
640 и 1: 1280 на 12—20-й день болезни. В данной задаче диагностический титр
1: 800. После обработки 2-меркаптоэтанолом он стал

1: 400.
Следовательно, в сыворотке крови больного много иммуноглобулинов М, что
свидетельствует о первичном заболевании.

1. При исследовании сыворотки больного с подозрением на
   сыпной тиф получены следующие результаты РСК: титр антител с антигеном
   из риккетсий Провачека 1:400, с антигеном из риккетсий Музера 1:50. Как
   вы расцените результаты исследования?

6. В инфекционное отделение поступил
больной с подозрением на сыпной тиф (11 сутки заболевания). Какой метод
исследования следует применить для установления диагноза? Как
отдифференцировать текущее заболевание от перенесенного в прошлом?

Ответ:
Необходимо провести серологическое исследование (определение специфических
антител в крови). С этой целью применяют РСК, РА,РНГА,РИФ,ИФА. Так как у
больного уже идет 2-я неделя заболевания, то это исследование будет
обосновано, так как на 1-ой неделе заболевания у больных невозможно выявить
специфические антитела. (сыпь появляется ко 2 неделе) максимальных величин
титры антител достигают на 15-30 сутки при отсутствии лечения антибиотиками.
Отличить текущее заболевание от перенесенного в прошлом можно, если
использовать непрямую реакцию иммунофлюоресценции,  которая позволяет дифференцировать
антитела, появляющиеся при возникновении заболевания (IgM), от циркулирующих
после перенесенного сыпного тифа (IgG).

5. В инфекционное отделение больницы
в тяжелом состоянии поступил больной с диагнозом «сыпной тиф». Из анамнеза
установлено, что он болеет 10 дней. С целью подтверждения предварительного
диагноза врач назначил исследование. Какой материал необходимо взять у
больного для проведения исследования? Какое исследование необходимо провести?

Ответ:
Необходимо для исследования взять у больного кровь и провести серологическое
исследование (определение специфических антител в крови). С этой целью
применяют РСК, РА,РНГА,РИФ,ИФА. Так как у больного уже идет 2-я неделя
заболевания, то это исследование будет обосновано, так как на 1-ой неделе
заболевания у больных невозможно выявить специфические антитела. (сыпь
появляется ко 2 неделе) максимальных величин титры антител достигают на 15-30
сутки при отсутствии лечения антибиотиками.

Чаще используют РСК с риккетсиозным антигеном
(приготовленным из риккетсий Провачека), диагностическим титром считается
1:160 и выше, а также нарастание титра антител. Используют и другие серологические
реакции (реакция микроагглютинации, гемагглютинации и др.).

1. При исследовании фекалий больного с диареей была
   выделена чистая культура возбудителя – грамотрицательные мелкие
   одиночные палочки. На агаре Эндо образовывали ярко-красные колонии, на
   агаре Плоскирева – бесцветные полупрозрачные колонии, в питательном
   бульоне давали равномерную муть. Штамм бихимически оказался очень
   активным: ферментировал глюкозу и лактозу с выделением кислоты и газа,
   сахарозу, манит и мальтозу. Какие микроорганизмы обладают подобными
   свойствами? Достаточно ли данных для идентификации культуры и постановки
   диагноза? Какие методы исследования кроме использованного можно
   предложить?

Ответ:
Подобными свойствами обладают бактерии семейства энтеробактерий, род
эшерихии, вид эшерихия коли. Нет, данных не вполне достаточно для постановки
диагноза. Необходимо  провести
серотипирование:

·        
Ориентировочная реакция агглютинации на стекле со
смесями ОВ-сывороток;

·        
Ориентировочная реакция агглютинации на стекле с
моновалентными типоспецифическими ОВ-сыворотками;

·        
Развернутая реакция агглютинации с моновалентной
типоспецифической ОВ-сывороткой и тогда можно будет дать окончательный ответ.

1. К врачу-гинекологу обратилась женщина с жалобой на
   постоянные боли в малом тазу, нерегулярный цикл, отсутствие
   беременности. Врач поставил предварительный диагноз и направил больную
   на дополнительное исследование, необходимое для выявления природы
   возбудителя. Какие микроорганизмы могут вызывать подобное состояние?
   Какие методы микробиологической диагностики можно использовать в этом
   случае?

Ответ: Neisseria gonorrhoeae. Гонококк. Для диагностики применяют бактериоскопический ( окр.по
Граму и метилен.синим),бактериологический (проводят когда гонококки в мазках
не обнаруживают или находят атипичные, измененные формы), и серологический
(используют при хронической гонорее, при отсутствии у больного выделений.
Проводят РСК по Борде-Жангу, которая бывает положительной с 3-4 недели
болезни. В качестве АГ для РСК применяют гоновакцину или АГ из убитых гонококков)
методы.
Метод – экспресс:  применяют
встречный иммуноэлектрофорез. В качестве антигенов берут отделяемое из
мочеиспускательного канала или шейки матки обследуемых. Источником антител
служит гипериммунная антигонококковая сыворотка.

(Суть метода
встречного иммуноэлектрофореза
заключается в следующем:

— исследуемые
антигены и смесь антител помещают в лунки, расположенные на противоположных
концах пластины с гелем;

— вдоль линии,
соединяющей лунки, пропускают постоянный электрический ток;

— в электрическом
поле антитела и антигены быстро перемещаются по направлению друг к другу;

— в месте
связывания антигенов с антителами образуются линии преципитации.

Встречный
иммуноэлектрофорез применяют, когда антигены и антитела обладают разной
электрофоретической подвижностью. Этот метод позволяет быстро определить
антитела в пробе и применяется в экспресс диагностике инфекционных
заболеваниях.)

26.

Больная р., 31
год, обратилась к врачу с жалобами на слабость, головную боль, тошноту,
тяжесть в эпигастральной области, двукратную рвоту, отсутствие аппетита,
высокую температуру (38⁰С), темную окраску мочи. Считает себя
больной 4-й день. Из анамнеза известно, что больная работает продавцом на
овощном рынке, правила гигиены соблюдает не всегда, иногда ест немытые
фрукты. За последние полгода парентеральных вмешательств, посещений
стоматолога и гинеколога не было. Замужем, внебрачные связи отрицает. Ранее
гепатитом не болела. Каким образом могло произойти заражение пациентки? Какие
данные эпиданамнеза указывают на гепатит А и исключают другие вирусные
гепатиты? Какой материал для исследования следует взять и какой метод
использовать для подтверждения диагноза?

Ответ: 
1.Заражение пациентки могло произойти алиментарным путем(через немытые
фрукты)

       
2.из анамнеза ясно что заражение произошло алиментарным путем(не было
контактов с кровью и половых связей).данным путем передаются лишь 2 вида
геппатита-А,Е. при геппатите Е источником инфекции являются больные люди,а
основной путь передачи-водный.При геппатите А мех-м
заражения-фекально-оральный.Вирусы передаются через предметы
обихода,продукты,грязные руки,что указывает на то что пациентка больна именно
геппатитом А.

       
3. Мат.для исследования-кровь,испражнения,слюна,желчь. Основным
методом диагностики в данном случае будет Серодиагностика(определение
АТ,метод парных сывороток,ИФА,РИА,РНГА и др.),но тем не менее это даст лишь
предварительный ответ.Так же следует исп. Вирусоскопический(электронная
микроскопия(ВГА,ВГЕ)) и Экспресс-методы(1.ПЦР-обнаруж.РНК,ДНК 2.ДНК-зонды
3.ИФА,РНГА,РИА-опред АГ). в сумме эти 3 метода дадут окончательный ответ.

27.

Пациент С., 27
лет, был направлен в инфекционную клинику с симптомами гепатита. Больной
жалуется на слабость, быструю утомляемость, отсутствие аппетита. За последние
дни повысилась температура тела до 37,8⁰С, моча приобрела цвет
пива, кал обесцветился. При обследовании отмечается боль в эпигастральной
области справа, печень уплотнена и болезненна. Из анамнеза известно, что
больной имел несколько месяцев назад интимные отношения с женщиной, которая
впоследствии заболела вирусным гепатитом В. Врач поставил пациенту
предварительный диагноз «Вирусный гепатит В, острый период заболевания».
Какие результаты лабораторных исследований позволяют подтвердить диагноз
«Гепатит В» и отдифференцировать его от других вирусных гепатитов? С помощью
каких маркеров можно определить, что имеет место первичное инфицирование, а
не обострение хронического гепатита В?

Ответ: Диагноз гепатит В позволяют поставить
следующие симптомы: боль в эпигостральной области справа, печень уплотненная,
болезненная,  так как клиническая
картина гепатита В характеризуются поражением печени. От других видов
гепатита позволяет отдеференцировать то, что заболевание передается при
половом контакте, через микротравмы.

Переход острой фор­мы в хроническую
обеспечивается наруше­нием Т-клеточного иммунитета. Первичная инфекция
характеризующаяся исчезно­вением из крови НВе-антигена и появлением антител к
нему: анти—HBc—IgM анти—HBe—IgM, анти— HBc—IgG, анти—HBs антител 

29.

Молодой
специалист Александр Р., 23 года, при поступлении на пищевое предприятие был
направлен на медицинское обследование для получения «Медицинской книжки». При
отсутствии жалоб у обследованного обнаружено увеличение печени. Из
скрининговых исследований методом ИФА на гепатиты положительной оказалась
реакция на гепатит С. Пациент признался, сто в 16-летнем возрасте он вместе с
группой подростков несколько раз пробовал наркотики, которые они вводили
внутривенно, пользуясь одним шприцом. Пациенту был поставлен диагноз
«ГепатитС, хроническая форма». Какие лабораторные исследования нужно провести
для подтверждения диагноза у пациента? Каковы принципы лечения хронической
формы гепатита С?

Ответ: Диагностика. Используются ПЦР и серо­логическое
исследование. Подтверждением активного инфекционного процесса является
обнаружение в крои вирусной РНК ПЦР. Серологическое исследование направлено
на определение антител к NS3 в парных сыво­ротках методом ИФА.

Профилактика и лечение. Для профилакти­ки используют те же
мероприятия, что и при гепатите В. Важнейшей и наиболее эф­фективной мерой
профилактики гепатита В является исключение попадания вируса при
парентеральных манипуляциях и перелива­ниях крови. Это достигается: а)
применением одноразовых шприцев, систем переливания крови, инструментов с
последующим, после их использования, регламентированным сбо­ром и
уничтожением; б) надежной стерилиза­цией инструментов в централизованных пун­ктах;
в) проверкой на гепатит В по наличию HBs-антигена в крови доноров крови, органов и тканей,
используемых для трансплантации и искусственного обсеменения; г) учетом всех
вирусоносителей в диспансерах и лечением больных гепатитом В в
специализированных отделениях инфекционных больниц; д) обя­зательной работой
персонала, имеющего дело с кровью, в перчатках. Группу высокого риска
заражения гепатитом В составляют хирурги, гинекологи, акушеры, стоматологи,
манипуляционные сестры, сотрудники отделений переливания крови, гемодиализа,
сотрудники лабораторий и лица, занятые в производстве иммунобиологических
препаратов из донорс­кой и плацентарной крови.

Для предотвращения передачи гепатита В половым путем принимают все те
же меры, что при ВИЧ-инфекции.

Для лечения применяют интерфе­рон и рибовирин. Специфическая
профилак­тика не разработана.

В основе лечения гепатита С
лежит интерферонотерапия (интерферон, индукторы интерферона), а также
применение противовирусных препаратов. Принципы режима, диеты,
патогенетической терапии сходны для всех гепатитов

30.

Участковый
педиатр был вызван к 8-летнему мальчику. Ребенок болен 2-й день. Заболел
внезапно, резко поднялась температура (38,5⁰С), появилась сильная
головная боль, мышечные боли, слабость. На следующий день присоединился сухой
кашель, першение в горле. Аппетит отсутствует. В его классе болеет несколько
детей. Врач поставил диагноз «ОРВИ, возможно грипп». Какие методы следует
использовать для уточнения диагноза? Опишите этапы вирусологического метода,
с какой целью его применяют? В чем заключается экстренная профилактика
гриппа, когда следует ее проводить?

Ответ: Диагноз «грипп» базируется на
(1) выделении и иден­тификации вируса, (2) определении вирусных АГ в клетках
больного, (3) поиске вирусоспецифических антител в сыворотке больно­го. При
отборе материала для исследования важно получить пораженные вирусом клетки,
так как именно в них происходит репликация вирусов. Материал для исследования
— но­соглоточное отделяемое, которое берут там­понами или отсасывают с задней
стенки глот­ки и носа в первые три дня болезни. Иногда исследуют
мазки-отпечатки со слизистой но­са. Возможно постмортальное исследование
аутопсийного материала (кусочки поражен­ной легочной ткани, соскобы со
слизистой бронхов и трахеи). Материал доставляют в лабораторию, поместив в
специальные рас­творы для сохранения жизнеспособности ин­фицированных вирусом
клеток. Вирус гриппа теряет свою инфицирующую активность при температурах от
—1 до — 20 °С, поэтому мате­риал либо хранят при +4 °С, если исследова­ние
планируется в ближайшие 1—2 дня после взятия материала, либо замораживают при
температуре ниже —50 °С, если исследование будет проводиться в более поздние
сроки. Для определения антител исследуют парные сыворотки крови больного.

Вирусологическое исследование. Исследуемый материал по­мещают в транспортную
среду, содержащую антимикробные препараты широкого спектра действия для
уничтожения сопут­ствующей бактериальной флоры. Затем материал центрифуги­руют.
Для выделения чистой культуры производят заражение культур клеток
надосадочной жидкостью. В зависимости от предполагаемого возбудителя
используют разные типы клеточ­ных культур: клетки человека (первичные
культуры эмбрио­нальных клеток, диплоидные линии фибробластов, перевивае­мые
клеточные линии HeLa, НЕр-2 и др.) или животных
(пер­вичные культуры клеток почки обезьян, линии мышиных фиб­робластов и
др.). Культивирование респираторных вирусов мо­жет занимать от 2—3 до 20 сут
и более в зависимости от природы возбудителя. Так, выделение аденовирусов
занимает в среднем 6 сут, риновирусов — 4—5 сут, вируса гриппа — 3—4 суг,
реовирусов — около 3 нед. Индикацию вирусов про­изводят по ЦПД, Для индикации
гемагглютинирующих виру­сов (грипп, парагрипп) может быть использована
реакция гем- адсорбции (см. тему 5.2), которая становится положительной еще
до появления ЦПД. Идентификацию респираторных ви­русов осуществляют по их
антигенной структуре с помощью иммунологических методов [иммунофлюоресценция,
РТГА, РСК, реакция нейтрализации (РН), ИФА и др.]. Эти же реак­ции используют
для типирования выделенных вирусов. При­меняют также биохимические (анализ
фрагментов вирусных НК методом электрофореза) и молекулярно-биологические ме­тоды
идентификации (ПЦР, метод нуклеиновых зондов).

Вирусологическое исследование не применяется для диа­гностики
заболеваний, вызванных коронавирусами и PCB, в связи со сложностью их культивирования.

В ряде случаев для выделения вируса гриппа
используют куриные эмбрионы. Наличие вирусов гриппа в амниотической или
аллантоисной жидкости устанавливают с помощью РГА (см. тему 5.2). Вирусы гриппа
А хорошо агглютинируют эрит­роциты курицы, морской свинки, человека с группой
крови 1(0), вирусы гриппа В — эритроциты курицы. Этот метод по­зволяет также
установить титр вируса.

Идентификацию и типирование выделенной чистой культу­ры
вируса гриппа осуществляют на основании антигенной структуры с помощью
серологических реакций. Тип вируса (А, В или С) определяют в РСК. Подтипы
вируса гриппа А по Н- и N-анти генам (H0N1, H1N1, H2N2, H3N2 и др.) — в
реакциях с набором типоспецифических сывороток к гемаг- глютинину и
нейраминидаэе (см. табл. 10.1.2 и 10.1.3). Иден­тификацию по Н-антигену
проводят в РТГА, результаты реак­ции учитывают по отсутствию гемагглютинации.
Для опреде­ления N-антигена применяют реакцию
ингибиции нейрамини- дазы и реакцию иммунопреципитации в геле. Результаты
РТГА (рис, 18.1.1; на вклейке), приведенные в табл. 10.1,3, свиде­тельствуют,
что гемагглютинируюшая активность исследуемого вируса нейтрализуется
типоспецифической сывороткой N3H2 в разведениях 1:10—1:160 (до ее титра), т.е. исследуемый
вирус относится к подтипу N3H2.

Смотреть
только вирусологическое исследование

Для экстренной химиопрофилактики во время эпидемии гриппа можно
применять ингибиторы нейраминида­зы, а также арбидол и ремантадин (в течение
не менее 2—3 недель). Следует помнить, что действие ремантадина ограничено
типом ви­руса, а также то, что он может вызвать побоч­ные эффекты
(возбуждение ЦНС, желудочно- кишечные расстройства).

Специфическая плановая профилактика со­стоит в
применении вакцин. Их применяют перед началом эпидемического сезона (октябрь
— середина ноября). Вакцинирование рекомен­довано прежде всего лицам из
группы высокого риска, персоналу лечебных учреждений и т. п. В результате
заболеваемость снижается в 2,5 раза у привитых лиц по сравнению с неприви­тыми.
Разработано несколько разновидностей вакцин для профилактики гриппа А и В,
приго­товленных на основе штаммов, прогностически «актуальных» в данный
эпидсезон. Вакцинные штаммы обновляются раз в 2—3 года. В настоя­щее время в
России разрешены к применению вакцины: живые аллантоисные интраназальная и
подкожная, тривалентные инактивированные цельновирионные гриппозные
интраназальная и парентеральная-подкожная («Грипповак»), химические
«Инфлювакс», «Агриппал», поли- мер-субъединичная «Гриппол», сплит-вакцины
«Ваксигрипп», «Бегривак», «Флюарикс» и т.д. Живые вакцины создают наиболее
пол­ноценный, в том числе местный, иммунитет. Инактивированные
цельновирионные или «убитые» вакцины могут вызывать аллергию у лиц с
повышенной чувствительностью к овоальбумину.

31.

К школьнику
9-го класса Дмитрию К. был вызван участковый педиатр. Мальчик болен 30й день.
При обследовании врач констатировал высокую температуру (38,5⁰С),
кожа чистая, сыпи нет, сухой грубый кашель, веки отечны, слизистая конъюктивы
гиперемирована, нос заложен, слизистая носоглотки гиперемирована, на
слизистой щек имеются пятна Филатова-Коплика. Врач поставил предварительный
диагноз «Корь, катаральный период». Опишите патогенез кори, охарактеризуйте
тропизм вируса. Какие методы лабораторной диагностики следует применить для
подтверждения диагноза? Какие биопрепараты применяют для специфической
активной профилактики и серотерапии кори?

Патогенез. Возбудитель
проникает через сли­зистые оболочки верхних дыхательных путей и глаз, откуда
попадает в подслизистую оболоч­ку, лимфатические узлы. После репродукции он
поступает в кровь (вирусемия) и поражает эндотелий кровеносных капилляров,
обуслав­ливая тем самым появление сыпи. Развиваются отек и некротические
изменения тканей.

Тропизм.

Вначале отмечаются острые респира­торные проявления
(ринит, фарингит, ко­нъюнктивит, фотофобия, температура тела 38,8—39,0 °С).
Затем, на 3—4-й день, на сли­зистых оболочках и коже появляется пят­нисто-папулезная
сыпь, распространяюща­яся сверху вниз: сначала на лице, затем на туловище и
конечностях. За сутки до появ­ления сыпи на слизистой оболочке щек по­являются
мелкие пятна (диаметр около 1 мм) Филатова—Коплика, окруженные красным
ореолом. Заболевание длится 7—9 дней, сыпь исчезает, не оставляя следов.

Микробиологическая диагностика. Исследу­ют смыв с носоглотки, соскобы с элементов сыпи, кровь, мочу.
Вирус кори можно обна­ружить в патологическом материале и в зара­женных
культурах клеток с помощью РИФ, РТГА и реакции нейтрализации. Характерно
наличие многоядерных клеток и антигенов возбудителя в них. Для серологической
диа­гностики применяют РСК, РТГА и реакцию нейтрализации.

Специфическая профилактика. Активную специфическую профилактику кори прово­дят подкожным введением
детям первого года жизни или живой коревой вакцины из атте- нуированных
штаммов (Л-16), или ассоции­рованной вакцины (против кори, паротита,
краснухи). В очагах кори ослабленным детям вводят нормальный иммуноглобулин
чело­века. Препарат эффективен при введении не позднее 7-го дня
инкубационного периода.

32.

Мальчик Коля
И., 7 лет, стал капризным, отказывается от еды, сон беспокойный, температура
тела (38,5⁰С). На 2-й день после начала заболевания педиатр при
осмотре ребенка обнаружил увеличенную правую околоушную железу. Кожа над
припухлостью напряжена, но не воспалена. Врач поставил диагноз «Эпидемический
паротит». Перечислите звенья эпидемиологической цепочки: источник, возможные
пути передачи. Какие методы лабораторной диагностики следует использовать для
подтверждения диагноза? Какими препаратами может быть проведена специфическая
профилактика?

Ответ: Звенья эпид. цепочки:

Источник: больные
люди, возбудитель передаётся воздушно-капельным
путём, иногда – контактно-бытовым.

Вход ворота ВДГ1, вирус размножается в эпителии слизистых
ВДП и возможно околоушных железах, затем в кровь и по всему организму,
попадая в яички, поджелудочную и шитов-ю железы, мозговые оболочки и др
органы, вызывая воспаление.

Для подтверждения диагноза
необходимо провести:

·        
Вирусологический метод
(заражается куринный эмбрион)

·        
Идентификация проводится с
помощью РТГА, РИФ, РН, РСК

·        
Серологический метод парных
сывороток, выявляют антитела с помощью ИФА, РСК, РТГА.

·        
Экспресс-методы анализа (ПЦР,
ИФА, РИФ)

Профилактика спецефическая проводится детям старше 1 года,
вводя живую вакцину.(повтор в 6 лет)

34.

На прием к
гинекологу пришла женщина, 31 год, на 10 неделе беременности. Женщина
работает медсестрой в детском саду, где за последнюю неделю 3 детей заболело
краснухой. Пациентка тревожится за будущего ребенка. Почему женщина
тревожится? Какой материал следует взять у пациентки и каким методом
проверить, заразилась ли она? Как диагносцировать свежее заражение краснухой?
Какими препаратами и в какие сроки проводят активную профилактику краснухи?

Ответ: Вирус краснухи обладает тератогенным действием на
плод,особенно в первый триместр беременности. Вирус относится к семейству Togaviridae роду
ЯиЬгтгш^Врождённая краснуха- медленная вир инфе-я,развив-ся в рез-те
внутриутробного трансплацентарного заражения плода. Равиваются катаракта,
глухота и пороки сердца,а т.ж др аномалии развития.- умственная отсталость.
Вирус поражает моноциты и лимфоциты и длительно персистирует в них. Иммунитет
не стоекд.к формируется в условиях не зрелой иммунной системы плода. Как
осложнение может быть прогрессирующий краснушный панэнцефалит.

Материалом для исследования служит смывы со
слизистой обол носа и зева, моча, реже- испражнения. а т.ж кровь и
церебральную жидкость. Серологический методами: ИФА, ПЦР- выявление IgM и IgG в парных
сыворотках.а т.ж обнаружение AT
при помощи: РН,РСК,Р»ГГА, ИФА.

Диагностическое значение имеет 4-х кратное и
более увеличение титров антител, а также определение
IgM, свидетельствующем о недавно
перенесённом заболевании, либо первичном инфицировании.

Активную
профилактику проводят в соответствии с календарём прививок. 1 раз в 12
месяцев. 2 раз в 6 лет и иммунизацию девочек в 13 лет. (Живая вакцина против
краснухи на основе аттенуированных штаммов вируса. Так же используют
ассоциированные вакцины (паротитно-коревая-краснушная вакцина) и моновакцины
«рудивакс», «ервевакс» и др.

25.

В инфекционную
больницу поступил больной С., 27 лет, с жалобами на озноб, лихорадку (39,5⁰С),
мучительную головную боль, ломящие боли в конечностях и поясничной области,
тошноту и неоднократную рвоту. Больной заторможен. При обследовании выявлены
менингиальные симптомы и признаки очагового поражения ЦНС: парезы шеи, мышц
плечевого пояса, верхних конечностей. Из анамнеза известно, что пациент недели
3 назад обнаружил присосавшегося клеща. Против клещевого энцефалита не
вакцинировался. После осмотра больного врач поставил предварительный диагноз
«Клещевой энцефалит, менингоэнцефалитическая форма». На основании каких
данных поставлен диагноз данному больному? Какой материал от пациента
необходимо взять и какой метод лабораторной диагностики использовать для
подтверждения диагноза? Какие биопрепараты используют для специфической
активной профилактики и серотерапии клещевого энцефалита?

Ответ: 1.Диагноз был поставлен исходя из клинических проявлений
заболевания(озноб, лихорадку (39,5 С)мучительную головную боль, ломящие боли
в конечностях и поясничной области, тошноту и неоднократную рвоту. Больной
заторможен. При обследовании выявлены менингеальные симптомы и признаки
очагового поражения ЦНС, парезы шеи, мышц плечевого пояса, верхних
конечностей. ).Больной был укушен клещем з нед.назад,инкубационный период
совпадает(от 8 до 23 дней).Больной не вакцинировался,что также играет
значительную роль. Диагноз был поставлен несколько неточно,т.к. у пациента
скорее очаговая форма заболевания(наиболее тяжелая).именно при этой форме
возникают параличи шеи и верхних конечностей.

       2. Материалом исследования в данном
случае будут:кровь,цереброспинальная жидкость,инфицированный клещ.

Т.к. болезнь вызывается
Вирусом,целесообразнее всего в данном случае будет применить вирусологический
метод(1.заражение культур клеток.2.биопробы(новорожд.белые
мыши).3.РТГА,РН,РСК,РИФ).Именно этот метод даст окончательный ответ.
Серологический(метод парных сывороток и цереброспин.жидкости,РСК,РТГА) и Экспресс-методы(на
обнаружение вирусных АГ,РНГА,ИФА,ПЦР) дадут лишь предварительный ответ.

       3. Препараты: 1.Специфический
гомологичный донорский иммуноглобулин против клещ.энцефалита(получ.из плазмы
доноров,прожив.в природных очагах клещ.энцефалита и сод. высокий титр АТ к
вирусу.)

                     2. При отсутствии
вышеук.препарата назначают-Специфический гетерологичный лошадиный
иммуноглобулин. Серотерапию необходимо начинать не позднее 3-4 дня
заболевания.

                     3. при леч.тяжелых форм
клещ.энцефалита прим. иммуногемосорбцию и серотерапию иммуной плазмой
доноров.Помимо специф.препаратов
прим.виферон.йодантипирин,ридостин,рибонуклеазу

24.

Больной К., 32
года, поступил в терапевтическое отделение больницы по поводу пневмонии. В
последние полгода часто болеет: повторяется стоматит, обостряется фурункулез
и опоясывающий герпес. Больной сильно похудел, отмечает нарастающую слабость.
Имел гомосексуальные связи в течение 10 лет. результаты лабораторного
исследования: предварительный анализ на ВИЧ-инфекцию положительный (ИФА),
выявлена пневмоцистная природа пневмонии. Предварительный диагноз
«ВИЧ-инфекция». Какая стадия ВИЧ-инфекции у больного, что для нее характерно?
Каков прогноз для данного больного? Какой материал необходимо взять у пациента
и какой метод лабораторной диагностики использовать для подтверждения
диагноза?

Стадия 1 – «стадия
инкубации» — период от момента заражения до появления реакции
организма в виде клинических проявлений острой инфекции и/или выработки
антител. Продолжительность инкубации составляет от 3х недель до 3х месяцев, в
единичных случаях может затягиваться до года. В этот период происходит
активная репликация ВИЧ, но антитела к ВИЧ еще не выявляются. На этой стадии
заболевание можно заподозрить на основании эпидемиологических данных и
подтвердить обнаружением в сыворотке пациента ВИЧ, его антигенов и/или
нуклеиновых кислот.
Стадия 2 – «стадия первичных проявлений», связана с
проявлением первичного ответа макроорганизма на внедрение и репликацию ВИЧ в
виде клинических проявлений и/или выработки антител. Стадия первичных
проявлений ВИЧ-инфекции может иметь несколько вариантов течения:
2А – «бессимптомная», характеризуется отсутствием
клинических проявлений заболевания. Ответ организма на внедрение ВИЧ
проявляется только выработкой антител.
2Б – «острая инфекция без вторичных заболеваний»,
проявляется разнообразной клинической симптоматикой. Наиболее часто
наблюдаются лихорадка, экзантемы, энантемы, лимфаденопатия, фарингит,
гепатоспленомегалия, диарея. Иногда развивается асептический менингит,
проявляющийся менингеальным синдромом. Яркая мононуклеозоподобная
симптоматика отмечается у 15-30 % больных ВИЧ-инфекцией. В крови пациентов в
этот период могут обнаруживаться мононуклеары.у отдельных больных могут
отмечаться поражения аутоиммунной природы. При таком течении стадии первичных
проявлений часто отмечается транзиторное снижение уровня С D 4-лимфоцитов.

2В – «острая инфекция с
вторичными заболеваниями», характеризуется значительным снижением
уровня С D 4-лимфоцитов. На фоне иммунодефицита появляются кандидозы,
герпетическая инфекция пневмоцистная пневмония и пр.
 Стадия 3 – «субклиническая стадия» характеризуется
медленным нарастанием иммунодефицита, что связано с компенсацией иммунного
ответа за счет модификации и избыточного воспроизводства CD 4-клеток.
Основным клиническим проявлением этой стадии является персистирующая
генерализованная лимфаденопатия. Длительность субклинической стадии
составляет от 2-3х до 20 и более лет; в среднем она продолжается 6-7 лет.
Скорость снижения уровня CD 4-лимфоцитов в этот период составляет
0,05-0,07*109/л в год.
Стадия 4 – «стадия вторичных заболеваний», связана с
истощением популяции CD 4-клеток за счет репликации ВИЧ. На фоне выраженного
иммунодефицита развиваются инфекционные и/или онкологические вторичные
заболевания, что обусловливает клиническую картину стадии вторичных
заболеваний. В зависимости от тяжести вторичных заболеваний различают 4А, 4Б,
4В.
 Стадия 5 – «терминальная
стадия», проявляется необратимым течением вторичных заболеваний.
Больные погибают в течение нескольких месяцев. Число CD 4-клеток ниже
0,05*109/л. 

У больного стадия 2В.  В эту стадию  ВИЧ-инфици­рованный продолжает чувствовать
себя нормально. Длительность этого периода зависит от состояния здоровья и
иммунной си­стемы человека до инфицирования и от его поведения после
заражения. Чем крепче было здоровье человека на момент за­ражения и чем
больше он заботился о его поддержании после инфицирования, тем дольше длится
этот период. Продолжи­тельность этого периода в среднем 5—7 лет. СПИД —
синдром приобретенного иммунодефицита (III
и IV стадии по В.И.Покровскому). В этот период ВИЧ уже на­столько
разрушает иммунитет, что организм теряет способность защищаться. В это время
появляются серьезные проблемы со здоровьем, обусловленные разными инфекциями
и нарушением обмена веществ. В результате этого, вероятнее всего, человек
умирает. Если не будет применено соответствующее лечение, этот период может
длиться до 3 лет.

Микробиологическая диагностика. Основана на установлении факта
зараженности ВИЧ и определении стадии заболевания. Для этого применяют
комплекс эпидемиологических, клинических, иммунологических и лабораторных
данных. Вирусологические и серологические исследования включают методы
определения антигенов и антител ВИЧ. ВИЧ-антитела появляются через 2—4 недели
после инфицирования и определяются на всех стадиях ВИЧ-инфекции и при СПИДе.
В более ранние сроки выявляются антигены ВИЧ. Метод выявления вируса в крови,
лимфоцитах превосходит по информативности другие тесты, однако он трудоемок и
дорог. Для определения ВИЧ-антител разработано множество тест-систем,
позволяющих выявлять до 99,9 % всех положительных проб. Однако при любой
положительной пробе для подтверждения результатов ставится реакция ИБ.
Применяют также ПЦР. способную выявлять ВИЧ-инфекцию в инкубационном и раннем
клиническом периоде, однако ее чувствительность несколько ниже, чем у ИФА.
Клинический и серологический диагнозы подтверждаются иммунологическими
исследованиями, если они указывают на наличие иммунодефицита у обследуемого
пациента

23.

В инфекционную
больницу поступила женщина 23 лет с высыпаниями на воспаленной коже и
слизистой гениталий. Высыпания имели вид сгруппировавшихся везикул диаметром
0,1-0,3см. Часть из них была эрозирована. Болезнь сопровождается лихорадкой,
болезненностью, зудом и жжение в пораженных участках. Женщина более 4-х
месяцев не имела половых контактов. Примерно полтора года назад у нее было
похожее заболевание в более легкой форме (вскоре после замужества), но к
врачу она не обращалась. Был поставлен диагноз «Рецидив генитального
герпеса». С чем связаны рецидивы герпеса? Где сохраняется вирус в
межрецидивный период? Какой материал необходимо взять у пациента и какой
метод лабораторной диагностики использовать для подтверждения диагноза?

Ответ: Реактивация  герпесвирусов и обострение (рецидив)
вызывается различными факторами (переохлаждение, лихорадка, травма, стресс,
сопутствующие заболевания, действие УФ и др.),снижающими иммунитет. Интервал
между действием этих факторов и проявлением клинических симптомов составляет
2-5 дней. Предполагают, что ДНК герпесвирусов проходит по аксону обратно к
нервному окончанию, где и может происходить развитие инфекции с репродукцией
вируса в эпителиальных клетках. В межрецидивный период вирус простого
герпеса-2(генитальный) сохраняется в сакральных ганглиях, а ВПГ-1 – в
тригеминальных и других ганглиях. Для диагностики используют содержимое
герпетических везикул. Основные методы – вирусологический, серологический.
Для выделения вируса исследуемым материалом заражают клетки HeLa, человеческие эмбриональные
фибробласты. Заражают также куриные эмбрионы и мышей-сосунков. Выделенный
вирус идентифицируют в РИФ и ИФА с использованием моноклональных антител.
Серодиагностику проводят с помощью РСК, РИФ,ИФА и реакции нейтрализации по
нарастанию титра антител больного.

22.

В Индию
прибыла группа врачей по линии ВОЗ для выявления больных полиомиелитом и
оказания помощи в проведении поголовной вакцинации против полиомиелита. В
одной из обследованных деревень к врачам принесли из многодетной семьи
мальчика 6 лет, который заболел 5 дней назад. Внезапно повысилась
температура, сильно заболела голова, была повторная рвота, боль в руках и
ногах. При обследовании: высокая температура, резкая слабость, менингеальные
симптомы, на правой ноге снижен мышечный тонус, резко ослаблены сухожильные
рефлексы, стопа свисает. При пункции спинномозгового канала цереброспинальная
жидкость вытекала под повышенным давлением, увеличено количество лимфоцитов,
бактерии не выделены. Поставлен предварительный диагноз «Паралитическая форма
полиомиелита». Каким путем мог заразиться мальчик? Как проводится
специфическая активная профилактика полиомиелита? Существует ли опасность
заражения других детей этой семьи, что необходимо предпринять?

Ответ: Мальчик
мог заразиться фекально-оральным путем через пищу, воду, а также
воздушно-капельным путем. Основной мерой профилактики полиомиелита является
иммунизация живой культуральной вакциной из 3-х серотипов штаммов Сэбина В
России применяется прививка от полиомиелита для перорального введения
производства института полиомиелита и вирусных энцефалитов им. М.П. Чумакова.
Прививка представляет собой трехвалентный препарат из аттенуированных штаммов
Сэбина вируса полиомиелита типов 1, 2, 3, полученных на первичной культуре
клеток почек африканских зеленых мартышек. . Плановым прививкам от
полиомиелита подлежат дети в возрасте от 3 мес до 6 лет. Прививки оральной
полиомиелитной вакциной проводятся по 2 или 4 капли вакцины внутрь троекратно
в 3, 4, 5 и 6 мес с трехкратной ревакцинацией в 18, 20 мес и 14 лет.  Больного мальчика необходимо поместить в
стационар, а всем остальным детям этой семьи необходимо провести вакцинацию
живой полиомиелитной вакциной.

СОГЛАСОВАНО

Заместитель
директора

по
научно-методической работе

_______________М.А. Жаров

«______»________________20____г.

СОГЛАСОВАНО

Заместитель
директора

по
учебной работе

_______________
Е.А. Дмитриева

«______»________________20____г.

Рассмотрено

на
заседании ЦМК Общепрофессиональных дисциплин

Протокол
№___от «____»_________20___г.

Председатель
__________ Э.Р.Ганичева

Пояснительная
записка ——————————————————

4

Ситуационные
задачи ———————————————————

5

Рекомендуемая
литература ————————————————-

10